检测蛋白质实验步骤-蛋白质检测实验教程***
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科学小实验――蛋白质检测怎么做?
1、蛋白质简单检测方法:变色试剂法、尿液测定法、低ryg钙素亲和层析法、BCA法或Lowry法。变色试剂法:例如用布拉德福试剂、比尔斯试剂等进行反应,会产生颜色变化,可以通过颜色的变化程度或者光密度的测量来估算蛋白质的含量。尿液测定法:尿液中的蛋白质含量可以作为一种快速检测指标。
2、蛋白质的盐析取5mL蛋白质溶液,加入等体积饱和硫酸铵溶液(浓度为50%饱和),微微摇动试管,使溶液混合均匀后,静置数分钟,球蛋白即析出呈絮状沉淀(如无沉淀可再加少许饱和硫酸铵),用滤纸滤取上清液,滤液中再加入固体硫酸铵粉末至不再溶解,析出的即为清蛋白,再加水稀释,观察沉淀是否溶解。
3、步骤 首先,我们要选择实验材料,最好选择高蛋白的食物浆液,这样会比较方便进行蛋白质的检测,比如豆浆和蛋清就是很好的选择。接着,就要准备双缩脲试剂,双缩脲试剂分为A液:氢氧化钠的质量分数为0.1g/mL的水溶液。B液:硫酸铜的质量分数为0.01g/mL的水溶液。
4、g/mL的水溶液。B液:硫酸铜的质量分数为0.01 g/mL的水溶液。在实验时,需要现在待测液体中先在加入A液,先制造出碱性环境,满足B液与蛋白质反应的条件,这样才可以方便进行蛋白质的检测。一段时间后,如果试管中的液体变为紫色,说明待测液体中含有蛋白质,而且颜色深浅与蛋白质浓度成正比。
5、凯氏定氮法 凯氏定氮法是测定化合物或混合物中总氮量的一种方法。即在有催化剂的条件下,用浓硫酸消化样品将有机氮都转变成无机铵盐,然后在碱性条件下将铵盐转化为氨,随水蒸气蒸馏出来并为过量的硼酸液吸收,再以标准盐酸滴定,就可计算出样品中的氮量。
简述考马斯亮蓝法测定蛋白质含量的过程
1、考马斯亮蓝(Coomassie Brilliant Blue)法测定蛋白质浓度,是利用蛋白质―染料结合的原理,定量的测定微量蛋白浓度的快速、灵敏的方法。这种蛋白质测定法具有超过其他几种方法的突出优点,因而正在得到广泛的应用。这一方法是目前灵敏度最高的蛋白质测定法。
2、考马斯亮蓝试剂:考马斯亮蓝G—250 100mg溶于50ml 95%乙醇,加入100ml 85% H3PO4,雍蒸馏水稀释至1000ml,滤纸过滤。最终试剂中含0.01%(W/V)考马斯亮蓝G—250,7%(W/V)乙醇,5%(W/V)H3PO4。
3、考马斯亮蓝法测定蛋白质含量流程 该方法用于大多数蛋白质的定量是比较精确的,但不适用于小分子碱性多肽的定量。如核糖核酸酶或溶菌酶。去污剂的浓度超过0.2%影响测定结果。如tritonx-100、sds、np-40等。
4、首先所有使用玻璃器皿都要洗干净。考马斯亮蓝应在乙醇、磷酸介质中尽量溶解充分。然后过滤定容摇匀。用固定的2个比色杯做标准空白比色杯固定,每次测完后用乙醇将测定A值的比色杯洗干净。
5、凯氏定氮法 双缩脲法 Folin-酚试剂法 紫外吸收法 考马斯亮蓝法 考马斯亮蓝法测定蛋白质含量—标准曲线制作 (一)、试剂: 考马斯亮蓝试剂:考马斯亮蓝G—250 100mg溶于50ml 95%乙醇,加入100ml 85% H3PO4,雍蒸馏水稀释至1000ml,滤纸过滤。
高一化学检验生物组织中的糖类、脂肪和蛋白质实验步骤
1、步骤:向试管内注入2mL待测组织样液。向试管内注入1mL斐林试剂(甲乙液混合均匀后再注入)。将试管放入盛有50~60℃温水的大烧杯中加热约2min。观察试管中出现的颜色变化。
2、因此,可以根据与某些化学试剂所产生的颜色反应,检测生物组织中糖类、脂肪或蛋白质的存在。操作指南 1.材料 苹果或梨匀浆,马铃薯匀浆,花生***(实验前浸泡3~4 h)及其匀浆,鸡蛋清(稀释10倍后使用),鲜肝提取液,质量分数为1%的葡萄糖溶液,食用油,豆浆,质量分数为1%的淀粉溶液。
3、糖类中还原糖(例葡萄糖、果糖、麦芽糖等)可用斐林试剂检测。先准备组织样液,再准备0·1g/ml的氢氧化钠溶液、0.05g/ml硫酸铜溶液。方法步骤:(1)取2ml组织样液加入1支洁净的试管。
4、做鉴定脂肪的实验,教师可根据本地区的情况选用苏丹III或苏丹IV染液。苏丹III染液遇脂肪的颜色反应为橘***,苏丹IV染液遇脂肪的颜色反应为红色。因苏丹IV染液与脂肪的亲和力比较强,所以,染色的时间应比较短,一般为1 min左右。
紫外分光光度法测定蛋白质含量
1、nm的光吸收法 用标准曲线法进行测定。标准蛋白质溶液配制的浓度为0 mg/mL。常用的标准蛋白质为牛血清清蛋白(BSA)。280 nm和260 nm的吸收差法 核酸对紫外光有很强的吸收,在280 nm处的吸收比蛋白质强10倍(每克),但核酸在260 nm处的吸收更强,其吸收高峰在260 nm附近。
2、紫外分光光度法测定蛋白质含量实验方法如下:实验部分 仪器与试剂:La***echUVPOWER紫外分光光度计;玻璃比色皿一套;考马斯亮蓝G250;牛血清蛋白;超纯水。试液的制备:牛血清蛋白标准溶液(1000ug/ml)的制备称取100mg牛血清蛋白置100ml容量瓶中,加入超纯水溶解并定容。
3、原理差异:紫外分光光度法是根据蛋白质分子中的共轭双键在280nm波长处有最大吸收峰的特性,通过测量吸光度值来计算蛋白质含量的。而考马斯亮蓝法是一种染料结合法,利用考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合形成复合物,使染料在595nm波长处的吸光度值发生变化,从而计算出蛋白质含量。
4、掌握紫外分光光度法测定蛋白质含量的原理和方法 掌握紫外光分光光度计使用 【实验原理】蛋白质中含有酪氨酸、色氨酸等氨基酸残基,在紫外光280nm波长处有最大吸收峰,故可用280nm的光吸收值(即光密度的大小)来测定蛋白质的含量。由于核酸在280nm也有光吸收,对蛋白质的测定有干扰作用。
5、Tyr)和苯丙氨酸(Phe)的R基团中含有苯环共轭双键系统,在紫外光区(220-300nm)显示特征的吸收谱带,最大光吸收(max)分别为2727和259nm。由于大多数蛋白质都含有这些氨基酸残基,因此用紫外分光光度法可测定蛋白质含量。因此可以用标准曲线法在280nm测样品吸光度,求得蛋白含量。
6、在紫外分光光度法中,蛋白质中的肽键在280nm处有强烈的吸收。通过测定溶液在280nm处的吸光度,可以确定蛋白质的含量。此法的优点是灵敏度和准确度都很高,可以用于微量蛋白质的测定。考马斯亮蓝法 考马斯亮蓝法是一种基于染料结合法的蛋白质测定方法。
蛋白质检验实验步骤
1、酚试剂法。取6支试管分别标号,前5支试管分别加入不同浓度的标准蛋白溶液,最后一支试管加待测蛋白质溶液,不加标准蛋白溶液,每支试管液体总量通过加入蒸馏水补足而保持一致,将液体混合均匀,在室温下放置30分钟,以未加蛋白质溶液的第一支试管作为空白对照,于650nm波长处测定各管中溶液的吸光度值。
2、试剂准备:考马斯亮蓝G-250染料需要提前溶解,通常使用乙醇和缓冲液混合配制。同时,需要准备标准蛋白溶液,用于制作标准曲线。样本处理:将待测样本与缓冲液混合,然后用组织匀浆器匀浆,保证样本均匀。反应:将样本与考马斯亮蓝G-250染料混合,放入沸水浴中加热10分钟,使染料与蛋白质充分结合。
3、小学蛋白质检验方法如下:蛋白质的盐析取5mL蛋白质溶液,加入等体积饱和硫酸铵溶液(浓度为50%饱和),微微摇动试管,使溶液混合均匀后,静置数分钟,球蛋白即析出呈絮状沉淀,用滤纸滤取上清液,滤液中再加入固体硫酸铵粉末至不再溶解,析出的即为清蛋白,加水稀释,观察沉淀是否溶解。
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